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更新時間:2026-01-06
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垂直電泳儀使用方法
垂直電泳儀是現(xiàn)代分子生物學和生物化學實驗室中用于分離蛋白質(zhì)或小片段核酸的關鍵設備。掌握規(guī)范的垂直電泳儀使用方法,對于獲得清晰、可重復的電泳結果至關重要。本文將系統(tǒng)介紹一套標準化的垂直電泳儀使用方法流程,涵蓋從前期準備到結果分析的核心步驟與要點。
核心原理與準備工作
在開始具體操作前,了解基本原理并做好充分準備,是成功實踐垂直電泳儀使用方法的基礎。垂直電泳通常指聚丙烯酰胺凝膠電泳,其核心是利用凝膠的分子篩效應,在垂直建立的電場中,根據(jù)生物大分子的分子量大小進行高分辨率分離。
實驗前,您需要準備:
儀器與耗材:垂直電泳槽及配套電源、兩塊潔凈的玻璃板、間隔條、梳子、制膠架。
試劑:根據(jù)目標分離范圍配制合適濃度的分離膠與濃縮膠溶液、電泳緩沖液(如Tris-Glycine)、蛋白上樣緩沖液、蛋白質(zhì)分子量標準品。
樣品:提前處理好的蛋白質(zhì)樣品(通常需與上樣緩沖液混合并加熱變性)。
垂直電泳儀使用方法分步詳解
一套完整的垂直電泳儀使用方法主要可分為以下五個階段。
階段一:灌制聚丙烯酰胺凝膠
這是垂直電泳儀使用方法中的關鍵步驟,決定分離效果。
組裝制膠模具:將兩塊玻璃板與間隔條對齊,用制膠夾固定,確保底部和兩側密封,形成一個夾心空腔。
配制與灌制分離膠:按比例混合分離膠各組分(注意:丙烯酰胺單體有神經(jīng)毒性,操作需在通風櫥內(nèi)并戴手套),迅速灌入玻璃板夾層至約三分之二高度,上層輕輕加入水或異丙醇封頂,以使膠面平整。
配制與灌制濃縮膠:待分離膠聚合(約30分鐘)后,倒掉上層封頂液。配制濃縮膠溶液,灌入剩余空間,立即插入合適的梳子,避免產(chǎn)生氣泡。
等待聚合:靜置約20-30分鐘,待濃縮膠聚合后,小心拔出梳子,可見清晰的加樣孔。
階段二:安裝凝膠與上樣
安裝凝膠夾層:將聚合好的凝膠夾層從制膠架上取下,緊密安裝到垂直電泳槽的內(nèi)核位置。確保短板(有加樣孔的一側)朝內(nèi)。
組裝電泳槽:將內(nèi)核放入外槽中,向內(nèi)、外槽均加入足量的電泳緩沖液,確保內(nèi)槽緩沖液漫過加樣孔,外槽緩沖液達到指定刻度。
準備與上樣:使用微量進樣器,將處理好的樣品及蛋白標準品,依次加入加樣孔底部。上樣過程需平穩(wěn)準確,避免樣品飄出孔外或產(chǎn)生氣泡。
階段三:電泳運行
這是垂直電泳儀使用方法的執(zhí)行環(huán)節(jié)。
連接電源:蓋好電泳槽安全蓋,正確連接電極(黑色陰極接上槽,紅色陽極接下槽)。
設置電泳參數(shù):打開電源,設置合適的電泳條件。通常采用恒壓模式,濃縮膠階段用較低電壓(如80V),待樣品進入分離膠后,可提高電壓(如120-150V)。電泳時間根據(jù)目標蛋白分子量和凝膠濃度調(diào)整。
監(jiān)控過程:觀察指示劑(溴酚藍)的遷移位置,待其遷移至凝膠底部附近時,即可停止電泳。
階段四:凝膠處理與分析
電泳結束后,后續(xù)處理取決于分析目的。
取膠:關閉電源,拔掉導線。倒出緩沖液,小心撬開玻璃板,取出凝膠。
染色與脫色:若進行考馬斯亮藍染色,將凝膠放入染色液中染色30分鐘以上,再轉入脫色液中脫色,直至背景清晰、條帶明顯。
成像與分析:使用凝膠成像系統(tǒng)拍照記錄。通過與蛋白標準品條帶對比,可估算目標蛋白的分子量。
關鍵注意事項與故障排查
遵循垂直電泳儀使用方法時,以下幾點尤為重要:
安全首要:全程佩戴手套,操作丙烯酰胺等有毒試劑時需在通風櫥內(nèi)進行。電泳運行時,勿觸碰電極或緩沖液。
確保密封與潔凈:灌膠時模具必須密封良好,防止漏膠。玻璃板和梳子需清洗干凈,否則可能導致凝膠剝離困難或加樣孔變形。
精準配制試劑:試劑的純度、pH值和配制準確性直接影響凝膠聚合質(zhì)量和分離效果。
上樣量適中:上樣量過多會導致條帶過寬、拖尾或重疊,影響分辨率和定量分析。
常見問題排查:若出現(xiàn)條帶歪斜,檢查凝膠是否均勻聚合、緩沖液是否足量;若條帶模糊,檢查樣品是否降解、電壓是否過高等。
總結
掌握規(guī)范的垂直電泳儀使用方法,需要理論與實踐相結合。從灌制一塊均勻透明的凝膠開始,到最終獲得清晰的蛋白條帶圖譜,每個環(huán)節(jié)都需細致操作。通過反復練習并總結經(jīng)驗,您將能高效利用垂直電泳儀這一強大工具,為蛋白質(zhì)純度鑒定、分子量測定及WesternBlot等后續(xù)實驗提供可靠的基礎。
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